1 绪论
总酚的测定
- 标准曲线的绘制
称取没食子酸标准品100.0 mg,用蒸馏水溶解并定容至100 mL,配制成1 mg/mL的储备液。将该储备液逐级稀释,得到浓度分别为0.02、0.04、0.06、0.08、0.1 mg/mL的标准系列溶液,备用。分别吸取上述各浓度没食子酸溶液0.6 mL于10 mL比色管中,再依次加入3 mL稀释2倍的福林-酚试剂和2.4 mL 7.5%碳酸钠溶液,充分振荡混匀后,于避光处静置30 min。以蒸馏水为空白调零,在765 nm波长处测定吸光度。以各比色管中没食子酸的浓度为横坐标,相应的吸光度为纵坐标,绘制标准曲线,并得到线性方程。
- 样品的测定
可将待测液适当稀释,使其吸光度落在标准曲线的线性范围内。准确吸取稀释后的待测液0.6 mL于10 mL比色管中,依次加入3 mL稀释2倍的福林-酚试剂和2.4 mL 7.5%碳酸钠溶液,充分振摇混匀,于避光处静置30 min后,在765 nm波长处测定吸光度。将测得的吸光度值代入线性回归方程,即可计算出待测液中没食子酸的含量。
- 计算
式中:
- M:样品中含有的没食子酸当量(总酚含量),mg/100g
- C:代入方程计算得到测定液中的没食子酸浓度,mg/mL
- V:提取液总体积,mL
- n:样液稀释倍数
- m:样品质量,g
2 试剂、耗材的准备
2.1 需要准备的试剂
- 【2.1.1】7.5%浓度的碳酸钠溶液(制备方法参见2.2.1)
- 【2.1.2】1mg/mL浓度的没食子酸溶液(制备方法参见2.2.2)
- 【2.1.3】稀释2倍的福林酚试剂(制备方法参见2.2.3)
- 【2.1.4】75%乙醇
2.2 试剂的制备
【2.2.1】7.5%浓度的碳酸钠溶液的制备(以配制100mL为例):
- 使用【电子天平】准确称量【无水碳酸钠】药体【7.5g】;
- 倒入【烧杯】,接取约80mL的【蒸馏水】;
- 搅拌使其充分溶解,然后转移到【容量瓶】中;
- 用少量蒸馏水冲洗搅拌用的【玻璃棒】,水冲到【烧杯】中,然后转移到【容量瓶】中
- 往容量瓶中加入蒸馏水,直到刻度线达到100mL。
【2.2.2】1mg/mL浓度的没食子酸溶液:
- 使用【电子天平】准确称量【没食子酸】药体【100mg(0.1g)】;
- 倒入【烧杯】,接取约80mL的【蒸馏水】;
- 搅拌使其充分溶解,然后转移到【容量瓶】中;
- 用少量蒸馏水冲洗搅拌用的【玻璃棒】,水冲到【烧杯】中,然后转移到【容量瓶】中。
- 往容量瓶中加入蒸馏水,直到刻度线达到100mL。
【2.2.3】稀释2倍的福林酚试剂的制备
- 倒取10mL福林酚试剂至烧杯
- 加入10mL蒸馏水
- 充分震荡混合
2.3 耗材的准备
- 【2.3.1】试管架
- 【2.3.2】移液枪(200-1000微升量程、1ml-10ml量程)、移液枪头若干
- 【2.3.3】容量瓶 * 3
- 【2.3.4】试管 * 5、离心管 * 5
- 【2.3.5】烧杯 *3
- 【2.3.6】紫外分光光度计(含比色管)
3 实验过程
3.1 准备5根试管,制备好的【7.5%浓度碳酸钠溶液】,【1mg/mL浓度的没食子酸溶液】,【稀释2倍的福林酚溶液】,移液枪。大概的材料准备如图1所示。

3.2 将5根试管标定为0.02,0.04,0.06,0.08,0.1mg/mL,使用【200-1000微升移液枪】吸取【1mg/mL没食子酸溶液】相应容量加入到对应的试管中;然后用【1-10毫升移液枪】加入对应量蒸馏水。具体配方参见 表1。此时获得【没食子酸溶液】。
| 目标浓度 | 吸取没食子酸液体积 | 加水体积 | 最终体积 |
|---|---|---|---|
| 0.02 mg/mL | 0.2 mL | 9.8 mL | 10 mL |
| 0.04 mg/mL | 0.4 mL | 9.6 mL | 10 mL |
| 0.06 mg/mL | 0.6 mL | 9.4 mL | 10 mL |
| 0.08 mg/mL | 0.8 mL | 9.2 mL | 10 mL |
| 0.10 mg/mL | 1.0 mL | 9.0 mL | 10 mL |
3.3 振荡试管,使没食子酸和蒸馏水充分混合。
3.4 再次准备5根试管,作为比色准备。
3.5 使用【200-1000微升移液枪】调至【600】,将5根试管中的【稀释没食子酸】溶液各吸取600微升,分别加到对应的新试管中。
3.6 使用【1-10毫升移液枪】调至【3.00】,吸取3毫升的【稀释2倍福林酚】到5根新试管中。
3.7 使用【1-10毫升移液枪】调至【2.40】,吸取2.4毫升的【7.5%浓度的碳酸钠溶液】到5根新试管中,参见图2。

3.8 避光静置30分钟,30分钟后的结果如图3所示。

3.9 将5根试管移至【紫外分光光度计】处,准备进行吸光度的测定。
3.10 找到【紫外分光光度计】的【比色管】,加入蒸馏水,准备调零:以【北京普析通用仪器有限责任公司】的T6系列紫外可见分光光度计为例进行设置:按【SET】设置光度方式:光度测量,按ENTER,光度方式按ENTER直到显示【Abs】,然后按【GOTO】键,输入765,按【ENTER】完成波长的设置。参考图4a。之后,在比色管中加入蒸馏水(仔细添加以不要出现气泡),磨砂玻璃面不要对着光度计探头!进行蒸馏水的调零。



3.11 测定完成后,获得实验数据,如图5a-图5e所示。





4 标准曲线的绘制
4.1 使用Origin(R)或Excel(TM)软件进行绘制:以没食子酸浓度为X轴,紫外分光光度计测定数值为Y轴,录入表格,数据来源如图5所示,以Origin为例的数据格式如图6所示。

4.2 生成折线图并进行拟合,令R^2值>0.99可以视同有效值。如图7所示。

5 番茄样品总酚的测定
5.1 从 -80°C 取出一个时间点样本,立刻放冰上;半解冻到能切割或研磨即可。
5.2 称取 5.00 g 番茄组织,记录实际称样量 m。每个时间点都尽量称 5.00 g。
5.3 加入 25.0 mL 80%乙醇,充分匀浆或研磨;避光振荡或超声 30 min。
5.4 离心机8000 rpm 离心 10 min,优先设置 4°C;取上清液到干净容器,参考图如图8所示。

5.5(可选) 残渣再加入 20.0 mL 80%乙醇,重复提取、离心一次。
5.6 合并两次上清,用 纯水定容至 50.0 mL,得到番茄总酚提取液。
默认计算参数:m = 5.00 g,V = 50.0 mL。若实际称样量或定容体积不同,用实际值计算。
5.7 每个时间点的提取液先做原液、2倍稀释、5倍稀释预试。
5.8 按标准曲线同样体系显色,测 765 nm 吸光度。
5.9 选择吸光度落在标准曲线范围内的稀释倍数n;正式测定时固定使用该 n。
5.10 每个样品至少做 2-3 个平行管,记录 A1、A2、A3 和平均吸光度。
5.11 若吸光度高于最高标准,继续稀释;若低于最低标准,优先使用原液并在记录中说明。
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